FN Archimer Export Format
PT J
TI Application of a micro-respirometric volumetric method to respiratory measurements of larvae of the Pacific oyster Crassostrea gigas
BT 
AF GOULLETQUER, Philippe
   WOLOWICZ, Maciej
   LATALA, Adam
   BROWN, Craig
   CRAGG, Simon
AS 1:;2:;3:;4:;5:;
FF 1:PDG-DRV-RA-LGP;2:;3:;4:;5:;
C1 IFREMER, Genet Aquaculture & Pathol Res Lab, F-17390 Ronce Les Bains, France.
   Univ Gdansk, Inst Oceanog, Dept Marine Ecosyst Funct, PL-81378 Gdynia, Poland.
   Scottish Assoc Marine Sci, Dunstaffnage Marine Lab, Oban PA37 1QA, Argyll, Scotland.
   Univ Portsmouth, Inst Marine Sci, Sch Biol Sci, Portsmouth PO4 9LY, Hants, England.
C2 IFREMER, FRANCE
   UNIV GDANSK, POLAND
   SCOTTISH ASSOC MARINE SCI, SCOTLAND
   UNIV PORTSMOUTH, ENGLAND
SI LA TREMBLADE
SE PDG-DRV-RA-LGP
IN WOS Ifremer jusqu'en 2018
   copubli-europe
IF 0.935
TC 7
UR https://archimer.ifremer.fr/doc/2004/publication-399.pdf
LA English
DT Article
DE ;Crassostrea gigas;Leachate;CCA;Volumetric micro respirometry;Larvae;Metabolism;Respiratory rate
AB L'utilisation d'une méthode simple, rapide et fiable de micro-respiration volumétrique est discutée. Les larves de l'huître creuse C. gigas de différentes tailles sont utilisées en tant que modèle biologique. L'activité métabolique de larves véligères est estimée par une mesure de respiration afin d'être utilisée dans le cadre d'une modélisation en écophysiologie. A titre d'exemple, cette méthode est appliquée pour tester l'effet de différentes concentrations de lixiviats issus de bois traité sous pression au chrome-cuivre-arsenic (CCA) sur le métabolisme larvaire. Les véligères de Crassostrea gigas (taille de 95 à 331  m) sont nourries d'un mélange de cellules phytoplanctoniques d'Isochrysis galbana et de Chaetoceros pumilum. Les expérimentations sont conduites à une température d'eau de mer constante à 20 °C. Les poids frais et secs de 4 classes de taille ( L, en  m) de larves sont mesurés afin d'établir un modèle [IMAGE] ( R2=99 %). Le poids de chair sec (TDW, en ng) est calculé selon Gerdes (1983). Le modèle mathématique entre la taille et le taux de respiration n'expliquant que 88 % de la variance totale, un modèle linéaire a été établi entre le taux de respiration (en  l O 2 h -1) et le poids de chair sec de la larve (en ng), expliquant 94.5 % de cette variance : [IMAGE]. Ces expérimentations ont permis d'actualiser les taux de respiration larvaire de C. gigas pour le développement de modèles écophysiologiques. Le modèle obtenu est relativement proche des estimations obtenues par Gerdes (1983) et Hoegh-Guldberg and Manahan (1995), respectivement à des températures de 25 °C et 20 °C. Nos expérimentations montrent que la méthode de micro-respiration volumétrique est appropriée pour l'estimation du métabolisme respiratoire larvaire comme pour celle de l'impact de polluants aux premiers stades de développement. Des huîtres exposées à des lixiviats de bois traités sous pression au chrome-cuivre-arsenic (CCA) à 5 kg m -3 ont montré une augmentation de la variabilité de la réponse respiratoire, avec une forte réduction de celle-ci à des lixiviats issus d'un traitement CCA à 15 kg m -3. Parmi les bioindicateurs utilisant une réponse physiologique pour évaluer les effets de polluants, la mesure du métabolisme respiratoire montre une réponse significative à des teneurs plus faibles en contaminants comparée à une mesure d'activité natatoire.
AB The application of a simple, fast and reliable volumetric microrespirometric method to assess respiration of bivalve larvae is discussed. As a model, C. gigas larvae of various sizes were used. Metabolic activity of veliger larvae was assessed by measuring respiratory rate for use in ecophysiological modelling. As an example of the application of this approach, additional measurements of veliger respiratory rates were carried out to assess the effect on larval metabolism of different concentrations of leachate from wood treated with chromated copper-arsenate (CCA). Veligers of Crassostrea gigas (length from 95 to 331 pm) were fed with a mixture of Isochrysis galbana) and Chaetoceros pumilum cells. Experiments were performed in a 20 degreesC constant seawater temperature. The wet and dry weight of four length (L in pm) classes of larvae were obtained from which the relationship between total dry weight and veliger length was derived {DW = e((3.27+Lx0.0154))} (R-2 = 99%). Moreover, tissue dry weight (TDW; in ng) was calculated according to Gerdes (1983). Since the mathematical model between larval length and respiratory rate explained 88% of the total variability. a more conservative approach using oyster larval dry meat weight (in ng) and respiratory rate (in mu\O-2 h(-1)) was developed to establish a linear model explaining 94.5% of the variability: Resp. = -3.849 x 10(-4) + 5.211 X 10(-6) X TDW. These experiments provided updated figures of C gigas larval respiratory rates for use in ecophysiological models. The relationship between tissue dry weight and respiratory rate was close to previous estimates obtained by Gerdes (1983) and Hoegh-Guldberg and Manahan (1995) at 25 degreesC and 20 degreesC respectively. Our experiments demonstrate that volumetric microrespirometry is suitable for assessing larval respiratory rate and therefore can be used to assess impacts Of Pollutants on an early larval stage. Oysters exposed to leachates from chromated copper arsenate (CCA) treated timber at 5 kg m(-3) showed initially highly variable respitory rates while those rates decreased drasctically for a 15 kg m(-3) CCA treatment exposure. Among bioindicators using physiological response to assess pollutant effects, swimming activity and respiratory rates can be compared, the later showing a significant response at a lower pollutant concentration.
PY 2004
PD APR
SO Aquatic Living Resources
SN 0990-7440
PU EDP Sciences
VL 17
IS 2
UT 000222591000012
BP 195
EP 200
DI 10.1051/alr:2004018
ID 399
ER

EF