Un protocole complet d'anesthésie chez les huîtres creuses devrait faciliter l'échantillonnage successif des mêmes animaux, sans les sacrifier, favorisant notamment l'étude de la gamétogenèse. Cette étude a pour but de définir des conditions fiables d'anesthésie adaptées à l'huître creuse, Crassostrea gigas. Trois groupes de 10 huîtres chacun (poids moyen $\pm $ écart-type, 32,1 $\pm $ 9,0 g) ont été anesthésiés dans des récipients de 5 L. Parmi les différents anesthésiants testés : benzocaïne, eugénol et trois types de chlorure de magnésium différents (un de laboratoire – Flucka $^{\circledR}$ et deux agricoles : DEUSA International $^{\circledR}$ et Dead Sea Works $^{\circledR })$, les chlorures de magnésium de laboratoire (concentration : 72 g L-1) ou destinés à l'agriculture (Dead Sea Work, 50 g L-1) sont les plus efficaces, anesthésiant respectivement 73 $\pm $ 3 % et 80 $\pm $ 3 % des huîtres après un traitement de trois heures. Un poids plus faible des huîtres ou une mise à jeun préalable de deux jours améliorent significativement les résultats. Une semaine après l'anesthésie, des pertes comprises entre 0 et 10 % des huîtres sont observées. L'accroissement de la durée du traitement de 3 à 16 h augmente de façon significative le nombre d'huîtres anesthésiées (de 50 $\pm $ 10 à 97 $\pm $ 6 %) sans modifier la mortalité observée (7 $\pm $ 11 %). La baisse de la température de l'eau de 19,5 à 15,3 °C diminue significativement l'efficacité de la technique. Ce protocole d'anesthésie s'avère très fiable : 100 % des animaux sont anesthésiés après un bain dans une solution de 50 g L-1 de MgCl2 (Dead Sea Work $^{\circledR })$ durant 16 h. Cette longue durée facilite l'échantillonnage et n'accroît pas la charge de travail. Le protocole a été validé par l'anesthésie et le prélèvement mensuel successif de gonades, réalisés durant une période de trois mois ; à l'exception d'une seule huître, aucune mortalité n'a été constatée. Ce protocole peut être utilisé lors de pratiques aquacoles.

A reliable anaesthesia and sampling protocol for Pacific oysters will enable experiments to be conducted without sacrificing animals and will facilitate successive sampling of individuals for gametogenesis studies. As no such techniques were available for Crassostrea gigas, the present study aimed to define suitable anaesthetic conditions for use with this species. Three groups of ten oysters (mean weight +/- SD, 32.1 +/- 9.0 g) were anaesthetised in 5 L containers. Among different chemicals: benzocaine, eugenol and three different types of magnesium chloride (a laboratory one Flucka (R) - and two designed for agriculture - DEUSA International (R) and Dead SeaWorks (R)) and concentrations tested, one laboratory (concentration: 72 g L-1) and one agricultural (Dead SeaWorks (R) 50 g L-1) type of magnesium chloride were the most effective, respectively inducing anaesthesia in 73 +/- 3% and 80 +/- 3% after three hours. Lower oyster weight and a two day period of starving prior to treatment significantly increased the number of anaesthetised animals. Using this protocol, losses of 0 to 10% of oysters were observed one week after anaesthesia. Increasing anaesthesia duration from 3 to 16 h resulted in a significant increase in the number of anaesthetised oysters (from 50 +/- 10 to 97 +/- 7%) but no increase in mortality (7 +/- 11%). On the other hand, reducing water temperature from 19.5 degrees C to 15.3 degrees C, resulted in a significant decrease in anaesthesia efficacy. A reliable anaesthesia protocol was developed: 100% of Pacific oysters are anaesthetised using 50 g L-1 MgCl2 Dead Sea Work (R) for a 16 h duration. This long duration facilitates tissue sampling and does not increase the working time needed. This protocol was validated by monthly anaesthesia and gonad sampling during a three month period with the loss of only a single oyster. It can thus be used for routine applications.