Une étude des interactions entre une souche toxique du dinoflagellé Prorocentrum lima produisant l'acide okadaïque (AO) et la dinophysistoxine 1 (DTX1) et de ses bactéries associées a été réalisée dans des conditions de culture. Une étude en microscopie électronique a montré que l'ultrastructure de ce dinoflagellé, bien que typique, présente des particularités, et que cette microalgue benthique est associées à une abondante microflore bactérienne. Les bactéries associées peuvent être libres, fixées sur les cellules de P. lima, tandis qu'un faible nombre de bactéries intracellulaires (endosymbiotiques ou infectieuses) est présent dans les cellules de P. lima. Un double marquage au moyen d'un anticorps anti-AO et d'un fluorochrome de l'ADN a montré la présence de d'AO, localisé principalement dans la périphérie du cytoplasme de P. lima. L'AO n'a pas été détecté dans l'ADN extranucléaire, montrant que ces bactéries ne contiennent pas la toxine. Les dosages par chromatographie liquide à haute pression (CLHP) et les marquages immunochimiques tendent à montrer que P. lima constitue la source principale de toxines dans la culture. De plus, une Protéobactérie du groupe alpha non photosynthétique, a été isolée de la culture. Cette bactérie, qui appartient à une espèce inconnue, semble capable de produire de faibles quantités d'AO et de DTX1. Les dosage en CLHP ont également révélé la libération d'une importante quantité de toxines dans le milieu extracellulaire et une faible adsorption de ces composés sur les bactéries libres. L'ensemble de la microflore bactérienne accroît la production de toxines lorsque P. lima est sénescent. Une production de toxines par la bactérie toxinogène est également possible à cette période de culture. L'hypothèse d'une action synergique entre P. lima et une ou plusieurs bactéries associées pour la synthèse de toxines est émise.

Interactions between a toxic strain of the dinoflagellate Prorocentrum lima Ehrenberg (Dodge), producing okadaic acid (OA) and dinophysistoxin 1 (DTX1), and its associated bacteria were studied in culture conditions. Electron microscopy showed a typical dinoflagellate ultrastructure, though with certain peculiarities, and the presence of an abundant associàted bacterial microflora free-living or bound to P. lima cells. A few intracellular (endosymbiotic or infectious) bacteria were also detected within P. lima cells. Double-staining with anti-OA antibody and DNA staining revealed the presence of OA mainly in peripheral cytoplasm. OA was not detected in extranuclear DNA, indicating that these bacteria do not contain the toxin. High-pressure liquid chromatography (HPLC) assays and immunochemical labelling tended to show that P. lima was the main source of toxin in the culture. Moreover, a Proteobacterium of the alpha group which is non-photosynthetic was isolated from the culture. This bacterium, belonging to an unknown species, appeared to produce low quantities of OA and DTX1. HPLC assays also showed that a large quantity of toxin was released into the extracellular environment and weakly adsorbed by free-living bacteria. Bacterial microflora increased toxin production in the culture when P. lima was senescent. Toxin production by toxinogenic bacteria might also take place during this culture period. It would seem likely that a synergistic action occurs between P. lima and one or more of its associated bacteria for toxin synthesis.